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細(xì)胞計數(shù)實驗(細(xì)胞計數(shù)實驗)

原理
細(xì)胞懸液制備后,需要計算懸液中所含細(xì)胞數(shù)量;一般以細(xì)胞數(shù)/mL 表示。因只有健康的細(xì)胞才有活力,接種后能夠生長增殖,所以在接種關(guān)應(yīng)先檢查一下細(xì)胞的活力。
材料與儀器
器材:培養(yǎng)液吸管
試劑:細(xì)胞懸液、臺盼藍(lán)、酒精。
步驟
(1) 計數(shù)板
用 96% 酒精沖洗計數(shù)板后,用干凈鹿皮擦凈,另擦凈蓋片一張;把蓋片覆在計數(shù)板上面,使之微微移向一側(cè),露出計數(shù)板臺面少許,以便滴加細(xì)胞懸液。
(2) 染色
取吸管 1 支,伸入培養(yǎng)瓶中,輕輕反復(fù)吹打細(xì)胞懸液使細(xì)胞重懸均勻后,立即吸細(xì)胞懸液少許,向另一離心管中滴入細(xì)胞懸液 9 滴,再滴入臺盼藍(lán)染液 1 滴,混勻,置 2~3 分鐘。
(3) 加懸液
把計數(shù)板平放在顯微鏡臺上,立即從計數(shù)板邊緣輕輕滴 1~2 滴已染色的細(xì)胞懸液,使之充滿計數(shù)板和蓋片間空隙中。
(4) 鏡檢
鏡下觀察可見細(xì)胞分散各處,健康細(xì)胞胞體完整,透明不著色,凡著色細(xì)胞均為不健康者。計算四角大方格內(nèi)的細(xì)胞數(shù);壓中線者只計算左線和上線者,右線和下線不計算在內(nèi)(即僅計算壓兩個邊的細(xì)胞)。
(5) 接種
培養(yǎng)通過計數(shù)測知懸液中細(xì)胞數(shù)后,可根據(jù)實驗所需細(xì)胞數(shù)量向培養(yǎng)容器中接種。細(xì)胞接種數(shù)量隨實驗?zāi)康?、血清含量和?xì)胞生物性狀而定;一般接種量在 1~10 × 105 細(xì)胞/mL 范圍,實驗周期短,希望細(xì)胞增殖較快時,接種量可大些。用含血清量大的培養(yǎng)液培養(yǎng)胚胎來源細(xì)胞、無限細(xì)胞系和惡性細(xì)胞系時,細(xì)胞接種數(shù)量不宜太大。
注意事項
(1) 向計算板中滴細(xì)胞懸液時要干凈利落,勿令液面蓋過蓋片,加量要適當(dāng),過多易使蓋片漂移,過少易出現(xiàn)氣泡,不理想時應(yīng)重做。
(2) 鏡下計數(shù)時,偶見有由兩個以上組成的細(xì)胞團(tuán),應(yīng)按單個細(xì)胞數(shù)計算,如細(xì)胞團(tuán)數(shù)占 10% 以上,說明消化不充分;功細(xì)胞數(shù)少于 200 個 / 10 mm2 或多于 500 個 / 10 mm2 時,均說明稀釋不當(dāng),需重新制備細(xì)胞懸液,再重計數(shù)。
(3) 經(jīng)常使用同一細(xì)胞在相同條件下工作時,對各種情況已做到心中有數(shù)情況下,可略去某些環(huán)節(jié),如染色檢查等;計算板計算細(xì)胞數(shù)法有一定誤差,用作測定細(xì)胞生長曲線時,每一樣品應(yīng)重復(fù)計算 4 次,取均值,較為可靠,若有電子細(xì)胞計數(shù)儀器當(dāng)然更好。
(4) 體外培養(yǎng)細(xì)胞在懸液中呈圓形,平均直徑 8~10 μm,當(dāng)被接種到底物上生長時,經(jīng)過延展后,則呈扁形,在底物上所占的面積按直徑算可達(dá) 20~25 μm,則 1 cm2 的底物上可容納 4~5 萬個這樣的細(xì)胞,這是理論上的數(shù)值,但在實際應(yīng)用中,當(dāng)細(xì)胞達(dá)到 80 % 匯合狀態(tài)時便應(yīng)做傳代處理,因此細(xì)胞數(shù)量比上述理論數(shù)量少。
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